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中 華 人 民 共 和 國 國 家 標(biāo) 準(zhǔn)
GB 4789.38-2012
食品安全國家標(biāo)準(zhǔn)
食品微生物學(xué)檢驗 大腸埃希氏菌計數(shù)
中 華 人 民 共 和 國 衛(wèi) 生 部
發(fā)布
2012-05-17 發(fā)布  2012-07-17 實施
GB 4789.38-2012
I
前 言
本標(biāo)準(zhǔn)代替 GB/T 4789.38-2008 《食品衛(wèi)生微生物學(xué)檢驗 大腸桿菌計數(shù)》。
本標(biāo)準(zhǔn)與 GB/T 4789.38-2008 相比，主要變化如下：
——修改了標(biāo)準(zhǔn)的中文名稱；
——修改了培養(yǎng)基和試劑；
——將“第二法 大腸桿菌 VRB-MUG 平板計數(shù)法”改為“大腸埃希氏菌平板計數(shù)法（第二法）”；
——刪除了“第三法 大腸桿菌 Petrifilm TM 測試片計數(shù)法”；
——修改了附錄 A。
GB 4789.38-2012
1
食品安全國家標(biāo)準(zhǔn)
食品微生物學(xué)檢驗 大腸埃希氏菌計數(shù)
1  范圍
本標(biāo)準(zhǔn)規(guī)定了食品中大腸埃希氏菌（Escherichia coli）計數(shù)的方法。
本標(biāo)準(zhǔn)適用于食品中大腸埃希氏菌的計數(shù)，其中大腸埃希氏菌平板計數(shù)法（第二法）不適用于貝類產(chǎn)
品。
2 術(shù)語和定義
2.1 大腸埃希氏菌  Escherichia coli
大腸桿菌
廣泛存在于人和溫血動物的腸道中，能夠在44.5℃發(fā)酵乳糖產(chǎn)酸產(chǎn)氣，IMViC（靛基質(zhì)、甲基紅、VP
試驗、檸檬酸鹽）生化試驗為＋＋－－或－＋－－的革蘭氏陰性桿菌。以此作為糞便污染指標(biāo)來評價食品
的衛(wèi)生狀況，推斷食品中腸道致病菌污染的可能性。
2.2 最可能數(shù)
基于泊松分布的一種間接計數(shù)方法，簡稱為MPN。
3 設(shè)備和材料
除微生物實驗室常規(guī)滅菌及培養(yǎng)設(shè)備外，其他設(shè)備和材料如下：
a） 恒溫培養(yǎng)箱：36 ℃±1 ℃；
b） 冰箱：2 ℃～5 ℃；
c） 恒溫水浴箱：44.5 ℃±0.2 ℃；
d） 天平：感量為 0.1 g；
c） 均質(zhì)器；
d） 振蕩器；
e） 無菌吸管：1 mL（具 0.01 mL 刻度）、10 mL（具 0.1 mL 刻度）或微量移液器及吸頭；
f） 無菌錐形瓶：容量 500 mL；
g） 無菌培養(yǎng)皿：直徑 90 mm；
h） pH 計或 pH 比色管或精密 pH 試紙；
i） 菌落計數(shù)器；
j） 紫外燈：波長 360 nm～366 nm，功率≤6 W。
4 培養(yǎng)基和試劑
4.1 月桂基硫酸鹽胰蛋白胨（LST）肉湯：見附錄 A 中 A.1。
4.2 EC 肉湯（E.coli broth）：見附錄 A 中 A.2。
4.3 蛋白胨水：見附錄 A 中 A.3。
GB 4789.38-2012
2
4.4 緩沖葡萄糖蛋白胨水[甲基紅(MR)和 V-P 試驗用]：見附錄 A 中 A.4。
4.5 西蒙氏檸檬酸鹽培養(yǎng)基：見附錄 A 中 A.5。
4.6 磷酸鹽緩沖液：見附錄 A 中 A.6。
4.7 伊紅美藍(lán)（EMB）瓊脂：見附錄 A 中 A.7。
4.8 營養(yǎng)瓊脂斜面：見附錄 A 中 A.8。
4.9 結(jié)晶紫中性紅膽鹽瓊脂（VRBA）：見附錄 A 中 A.9。
4.10 結(jié)晶紫中性紅膽鹽-4-甲基傘形酮-β-D-葡萄糖苷瓊脂（VRBA-MUG）：見附錄 A 中 A.10。
4.11 革蘭氏染色液：見附錄 A 中 A.11。
4.12 Kovacs 靛基質(zhì)試劑：見附錄 A 中 A.12。
4.13 無菌 1 mol/L NaOH：見附錄 A 中 A.13。
4.14 無菌 1 mol/L HCl：見附錄 A 中 A.14。
GB 4789.38-2012
3
5 大腸埃希氏菌 MPN 計數(shù)（第一法）
5.1 檢驗程序
大腸埃希氏菌MPN計數(shù)的檢驗程序見圖1。
圖1 大腸埃希氏菌MPN計數(shù)法檢驗程序
不產(chǎn)氣
36℃±1℃ 18h～24h
36℃±1℃ 18h～24h
36℃±1℃ 48h±2h
44.5℃±0.2℃ 48 h±2 h
檢樣
25g（mL）樣品+ 225ml 稀釋液，均質(zhì)
10 倍系列稀釋
選擇適宜 3 個連續(xù)稀釋度的樣品勻液，接種 LST 肉湯管
產(chǎn)氣
EC 肉湯
不產(chǎn)氣  產(chǎn)氣
EMB 平板劃線
可疑菌落移種營養(yǎng)瓊脂斜面或平板
IMViC 生化試驗，革蘭氏染色
陰性管 陽性管
查 MPN 表
報 告
GB 4789.38-2012
4
5.2 操作步驟
5.2.1 樣品的稀釋
5.2.1.1 固體和半固體樣品：稱取 25 g 樣品，放入盛有 225 mL 磷酸鹽緩沖液的無菌均質(zhì)杯內(nèi)，8 000
r/min～10 000 r/min 均質(zhì) 1 min～2 min，制成 1:10 樣品勻液，或放入盛有 225 mL 磷酸鹽緩沖液的無菌均質(zhì)
袋中，用拍擊式均質(zhì)器拍打 1 min～2 min 制成 1:10 的樣品勻液。
5.2.1.2 液體樣品：以無菌吸管吸取 25 mL 樣品置盛有 225 mL 磷酸鹽緩沖液的無菌錐形瓶（瓶內(nèi)預(yù)置適
當(dāng)數(shù)量的無菌玻璃珠）中，充分混勻，制成 1:10 的樣品勻液。
5.2.1.3 樣品勻液的 pH 值應(yīng)在 6.5～7.5 之間，必要時分別用 1 mol/L NaOH 或 1 mol/L HCl 調(diào)節(jié)。
5.2.1.4 用 1 mL 無菌吸管或微量移液器吸取 1:10 樣品勻液 1 mL，沿管壁緩緩注入 9 mL 磷酸鹽緩沖液
的無菌試管中（注意吸管或吸頭尖端不要觸及稀釋液面），振搖試管或換用 1 支 1 mL 無菌吸管或吸頭反復(fù)
吹打，使其混合均勻，制成 1:100 的樣品勻液。
5.2.1.5 根據(jù)對樣品污染狀況的估計，按上述操作，依次制成10倍遞增系列稀釋樣品勻液。每遞增稀釋1
次，換用1支1 mL無菌吸管或吸頭。從制備樣品勻液至樣品接種完畢，全過程不得超過15 min。
5.2.2 初發(fā)酵試驗
每個樣品，選擇 3 個適宜的連續(xù)稀釋度的樣品勻液（液體樣品可以選擇原液），每個稀釋度接種 3 管
月桂基硫酸鹽胰蛋白胨（LST）肉湯，每管接種 1 mL（如接種量超過 1 mL，則用雙料 LST 肉湯），36 ℃±1 ℃
培養(yǎng)24 h±2 h，觀察小倒管內(nèi)是否有氣泡產(chǎn)生，24 h±2 h產(chǎn)氣者進(jìn)行復(fù)發(fā)酵試驗，如未產(chǎn)氣則繼續(xù)培養(yǎng)48 h±2
h。產(chǎn)氣者進(jìn)行復(fù)發(fā)酵試驗。如所有 LST 肉湯管均未產(chǎn)氣，即可報告大腸埃希氏菌 MPN 結(jié)果。
5.2.3 復(fù)發(fā)酵試驗
用接種環(huán)從產(chǎn)氣的 LST 肉湯管中分別取培養(yǎng)物 1 環(huán)，移種于已提前預(yù)溫至 45 ℃的 EC 肉湯管中，放
入帶蓋的 44.5 ℃±0.2 ℃水浴箱內(nèi)。水浴的水面應(yīng)高于肉湯培養(yǎng)基液面，培養(yǎng) 24 h±2 h，檢查小倒管內(nèi)是否
有氣泡產(chǎn)生，如未有產(chǎn)氣則繼續(xù)培養(yǎng)至 48 h±2 h。記錄在 24 h 和 48 h 內(nèi)產(chǎn)氣的 EC 肉湯管數(shù)。如所有 EC
肉湯管均未產(chǎn)氣，即可報告大腸埃希氏菌 MPN 結(jié)果；如有產(chǎn)氣者，則進(jìn)行 EMB 平板分離培養(yǎng)。
5.2.4 伊紅美藍(lán)平板分離培養(yǎng)
輕輕振搖各產(chǎn)氣管，用接種環(huán)取培養(yǎng)物分別劃線接種于 EMB 平板，36 ℃±1 ℃培養(yǎng) 18 h～24 h。觀察
平板上有無具黑色中心有光澤或無光澤的典型菌落。
5.2.5 營養(yǎng)瓊脂斜面或平板培養(yǎng)
從每個平板上挑 5 個典型菌落，如無典型菌落則挑取可疑菌落。用接種針接觸菌落中心部位，移種到
營養(yǎng)瓊脂斜面或平板上，36 ℃±1 ℃，培養(yǎng) 18 h～24 h。取培養(yǎng)物進(jìn)行革蘭氏染色和生化試驗。
5.2.6 鑒定
取培養(yǎng)物進(jìn)行靛基質(zhì)試驗、MR-VP 試驗和檸檬酸鹽利用試驗。大腸埃希氏菌與非大腸埃希氏菌的生
化鑒別見表 1。
GB 4789.38-2012
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表 1 大腸埃希氏菌與非大腸埃希氏菌的生化鑒別
靛基質(zhì)（I）  甲基紅（MR）  VP試驗（VP）  檸檬酸鹽（C）  鑒定（型別）
＋
－
＋
＋
－
－
－
－
典型大腸埃希氏菌
非典型大腸埃希氏菌
＋
－
＋
＋
－
－
＋
＋
典型中間型
非典型中間型
－
＋
－
－
＋
＋
＋
＋
典型產(chǎn)氣腸桿菌
非典型產(chǎn)氣腸桿菌
注1：如出現(xiàn)表1以外的生化反應(yīng)類型，表明培養(yǎng)物可能不純，應(yīng)重新劃線分離，必要時做重復(fù)試驗。
注2：生化試驗也可以選用生化鑒定試劑盒或全自動微生物生化鑒定系統(tǒng)等方法，按照產(chǎn)品說明書進(jìn)行操作。
5.3 大腸埃希氏菌 MPN 計數(shù)的報告
大腸埃希氏菌為革蘭氏陰性無芽胞桿菌，發(fā)酵乳糖、產(chǎn)酸、產(chǎn)氣，IMViC 生化試驗為＋＋――或－＋
－－。只要有 1 個菌落鑒定為大腸埃希氏菌，其所代表的 LST 肉湯管即為大腸埃希氏菌陽性。依據(jù) LST
肉湯陽性管數(shù)查 MPN 表（見附錄 B），報告每 g（mL）樣品中大腸埃希氏菌 MPN 值。
6 大腸埃希氏菌平板計數(shù)法（第二法）
6.1 檢驗程序
大腸埃希氏菌平板計數(shù)法的檢驗程序見圖2。
圖 2 大腸埃希氏菌平板計數(shù)法檢驗程序
6.2 操作步驟
6.2.1 樣品的稀釋
按5.2.1進(jìn)行。
6.2.2 平板計數(shù)
檢樣
25g（ml）樣品+225ml 稀釋液，均質(zhì)
選擇 2 個～3 個適宜連續(xù)稀釋度的樣品勻液，接種 VRBA-MUG 平板
10 倍系列稀釋
紫外燈照射，計數(shù)發(fā)熒光菌落
報告結(jié)果
36 ℃±1 ℃ 18 h～24 h
GB 4789.38-2012
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6.2.2.1 選取 2 個～3 個適宜的連續(xù)稀釋度的樣品勻液，每個稀釋度接種 2 個無菌平皿，每皿 1 mL。同時
取 1 mL 稀釋液加入無菌平皿做空白對照。
6.2.2.2 將10 mL～15 mL 冷至45 ℃±0.5 ℃的結(jié)晶紫中性紅膽鹽瓊脂（VRBA）傾注于每個平皿中。小心
旋轉(zhuǎn)平皿，將培養(yǎng)基與樣品勻液充分混勻。待瓊脂凝固后，再加3 mL～4 mL VRBA-MUG覆蓋平板表層。
凝固后翻轉(zhuǎn)平板，36 ℃±1 ℃培養(yǎng)18 h～24 h。
6.3 平板菌落數(shù)的選擇
選擇菌落數(shù)在10 CFU～100 CFU之間的平板，暗室中360 nm～366 nm 波長紫外燈照射下，計數(shù)平板
上發(fā)淺藍(lán)色熒光的菌落。
檢驗時用已知MUG陽性菌株（如大腸埃希氏菌 ATCC 25922）和產(chǎn)氣腸桿菌（如ATCC 13048）做陽
性和陰性對照。
6.4 大腸埃希氏菌平板計數(shù)的報告
兩個平板上發(fā)熒光菌落數(shù)的平均數(shù)乘以稀釋倍數(shù)，報告每g （mL）樣品中大腸埃希氏菌數(shù)，以CFU/g (mL)
表示。若所有稀釋度（包括液體樣品原液）平板均無菌落生長，則以小于1乘以最低稀釋倍數(shù)報告。
GB 4789.38-2012
7
附錄A
培養(yǎng)基和試劑
A.1 月桂基硫酸鹽胰蛋白胨（LST）肉湯
A.1.1 成分
胰蛋白胨或胰酪胨  20.0 g
氯化鈉  5.0 g
乳糖  5.0 g
磷酸氫二鉀（K 2 HPO 4 ）  2.75 g
磷酸二氫鉀（KH 2 PO 4 ）  2.75 g
月桂基硫酸鈉  0.1 g
蒸餾水  1 000 .0mL
pH6.8±0.2 
A.1.2 制法
將上述成分溶解于蒸餾水中，調(diào)節(jié)pH。分裝到有玻璃小倒管的試管中，每管10 mL。121 ℃高壓滅菌 15
min。
制備雙料 LST 肉湯時，除蒸餾水外其他成分加倍。
A.2 EC 肉湯（ E.coli  broth）
A.2.1 成分
胰蛋白胨或胰酪胨  20.0 g
3 號膽鹽或混合膽鹽  1.5g
乳糖  5.0 g
磷酸氫二鉀（K 2 HPO 4 ）  4.0 g
磷酸二氫鉀（KH 2 PO 4 ）  1.5 g
氯化鈉 5.0 g
蒸餾水  1 000.0 mL
pH6.9±0.1 
A.2.2 制法
將上述成分溶解于蒸餾水中，調(diào)節(jié)pH，分裝到有玻璃小倒管的試管中，每管8 mL。121 ℃高壓滅菌15
min。
A.3 蛋白胨水
A.3.1 成分
胰胨或胰酪胨  10.0 g
蒸餾水  1 000.0 mL
pH6.9±0.2 
A.3.2 制法
加熱攪拌溶解胰胨或胰酪胨于蒸餾水中。分裝試管，每管5 mL。121 ℃高壓滅菌15 min。
A.4 緩沖葡萄糖蛋白胨水[甲基紅(MR)和 V-P 試驗用]
A.4.1 成分
多胨  7.0 g
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8
葡萄糖  5.0 g
磷酸氫二鉀（K 2 HPO 4 ）  5.0 g
蒸餾水  1 000.0 mL
pH7.0 
A.4.2 制法
將上述成分溶解于蒸餾水中，調(diào)節(jié)pH，分裝試管，每管1 mL，121 ℃高壓滅菌15 min，備用。
A.4.3 甲基紅（MR）試驗
A.4.3.1 甲基紅試劑
A.4.3.1.1 成分
甲基紅 10 mg
95%乙醇 30.0 mL
蒸餾水  20.0 mL
A.4.3.1.2 制法
10 mg甲基紅溶于30 mL95%乙醇中，然后加入20 mL蒸餾水。
A.4.3.1.3 試驗方法
取適量瓊脂培養(yǎng)物接種于緩沖葡萄糖蛋白胨水，36 ℃±1 ℃培養(yǎng)2 d～5 d。滴加甲基紅試劑一滴，立
即觀察結(jié)果。鮮紅色為陽性，黃色為陰性。
A.4.4 V-P 試驗
A.4.4.1 6%α-萘酚-乙醇溶液
成分及制法：取α-萘酚6.0 g，加無水乙醇溶解，定容至100 mL。
A.4.4.2 40%氫氧化鉀溶液
成分及制法：取氫氧化鉀40 g，加蒸餾水溶解，定容至100 mL。
A.4.4.3 試驗方法
取適量瓊脂培養(yǎng)物接種于緩沖葡萄糖蛋白胨水，36 ℃±1 ℃培養(yǎng)2 d～4 d。加入6% α-萘酚-乙醇溶液0.5
mL和40 %氫氧化鉀溶液0.2 mL，充分振搖試管，觀察結(jié)果。陽性反應(yīng)立刻或于數(shù)分鐘內(nèi)出現(xiàn)紅色，如為陰
性，應(yīng)放在36 ℃±1 ℃繼續(xù)培養(yǎng)4 h 再進(jìn)行觀察。
A.5 西蒙氏檸檬酸鹽培養(yǎng)基
A.5.1 成分
檸檬酸鈉  2.0 g
氯化鈉  5.0 g
磷酸氫二鉀  1.0 g
磷酸二氫銨  1.0 g
硫酸鎂  0.2 g
溴百里香酚藍(lán)  0.08 g
瓊脂  8.0 g～18.0g
蒸餾水  1 000.0 mL
pH 6.8±0.2 
A.5.2 制法
將各成分加熱溶解，必要時調(diào)節(jié) pH。每管分裝 10 mL，121 ℃高壓 15 min，制成斜面。
A.5.3 實驗方法
挑取培養(yǎng)物接種于整個培養(yǎng)基斜面，36 ℃±1 ℃培養(yǎng)24 h±2 h，觀察結(jié)果。陽性者培養(yǎng)基變?yōu)樗{(lán)色。
A.6 磷酸鹽緩沖液
A.6.1 成分
GB 4789.38-2012
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磷酸二氫鉀（KH 2 PO 4 ） 34.0g
蒸餾水  500.0 mL
pH7.2 
A.6.2 制法
貯存液：稱取34.0 g的磷酸二氫鉀溶于500 mL蒸餾水中，用大約175 mL的1 mol/L氫氧化鈉調(diào)節(jié)pH，用
蒸餾水稀釋至1000 mL后貯存于冰箱。
稀釋液：取貯存液1.25 mL，用蒸餾水稀釋至1 000 mL，分裝于適宜容器中，121 ℃高壓滅菌15 min。
A.7 伊紅美藍(lán)（EMB）瓊脂
A.7.1 成分
蛋白胨 10.0 g
乳糖 10.0 g
磷酸氫二鉀（K 2 HPO 4 ） 2.0 g
瓊脂 15.0 g
伊紅γ（水溶液） 0.4 g或2%水溶液20.0 mL
美藍(lán) 0.065 g或0.5%水溶液13.0 mL
蒸餾水  1 000.0 mL
pH7.1±0.2 
A.7.2 制法
在1 000 mL蒸餾水中煮沸溶解蛋白胨、磷酸鹽和瓊脂，加水補(bǔ)足。分裝于三角燒瓶中。每瓶100 mL或
200 mL，調(diào)節(jié)pH，121 ℃高壓滅菌15 min。使用前將瓊脂融化，于每100 mL瓊脂中加5 mL滅菌的20%乳糖
溶液，2 mL的2%的伊紅γ水溶液和1.3 mL 0.5％的美藍(lán)水溶液，搖勻，冷至45 ℃～50 ℃傾注平皿。
A.8 營養(yǎng)瓊脂斜面
A.8.1 成分
牛肉膏 3.0 g
蛋白胨  5.0 g
瓊脂  15.0 g
蒸餾水  1 000.0 mL
pH7.3±0.1 
A.8.2 制法
將上述成分加于蒸餾水中，煮沸溶解，調(diào)節(jié)pH。分裝合適的試管，121 ℃高壓滅菌15 min。滅菌后擺
成斜面?zhèn)溆谩?br /> A.9 結(jié)晶紫中性紅膽鹽瓊脂（VRBA）
A.9.1 成分
蛋白胨 7.0 g
酵母膏 3.0 g
乳糖 10.0 g
氯化鈉 5.0 g
膽鹽或 3 號膽鹽 1.5 g
中性紅 0.03 g
結(jié)晶紫 0.002 g
瓊脂 15 g～18 g
蒸餾水  1 000.0 mL
GB 4789.38-2012
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pH7.4±0.1 
A.9.2 制法
將上述成分溶于蒸餾水中，靜置幾分鐘，充分?jǐn)嚢瑁�調(diào)節(jié)pH。煮沸2 min，將培養(yǎng)基冷至45 ℃～50 ℃
傾注平板。使用前臨時制備，不得超過3 h。
A.10 結(jié)晶紫中性紅膽鹽-4-甲基傘形酮-β-D-葡萄糖苷瓊脂（VRBA-MUG）
A.10.1 成分
蛋白胨 7.0 g
酵母膏 3.0 g
乳糖 10.0 g
氯化鈉 5.0 g
膽鹽或 3 號膽鹽 1.5 g
中性紅 0.03 g
結(jié)晶紫 0.002 g
瓊脂 15 g～18 g
蒸餾水  1 000.0 mL
4-甲基傘形酮-β-D-葡萄糖苷（MUG） 0.1 g
pH7.4±0.1 
A.10.2 制法
將上述成分溶于蒸餾水中，靜置幾分鐘，充分?jǐn)嚢�，調(diào)節(jié)pH。煮沸2 min，將培養(yǎng)基冷至45 ℃～50 ℃
使用。
A.11 革蘭氏染色液
A.11.1 結(jié)晶紫染色液
A.11.1.1 成分
結(jié)晶紫 1.0 g
95％乙醇 20.0 mL
1％草酸銨水溶液 80.0 mL
A.11.1.2 制法
將結(jié)晶紫完全溶解于乙醇中，然后與草酸銨溶液混合。
A.11.2 革蘭氏碘液
A.11.2.1 成分
碘 1.0 g
碘化鉀 2.0 g
蒸餾水 300.0 mL
A.11.2.2 制法
將碘與碘化鉀先行混合，加入少許蒸餾水充分振搖，待完全溶解后，再加蒸餾水至300 mL。
A.11.3 沙黃復(fù)染液
A.11.3.1 成分
沙黃 0.25 g
95％乙醇 10.0 mL
蒸餾水 90.0 mL
A.11.3.2 制法
將沙黃溶解于乙醇中，然后用蒸餾水稀釋。
A.11.4 染色法
GB 4789.38-2012
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A.11.4.1 涂片在火焰上固定，滴加結(jié)晶紫染液，染1 min，水洗。
A.11.4.2 滴加革蘭氏碘液，作用1 min，水洗。
A.11.4.3 滴加95%乙醇脫色約15 s～30 s，直至染色液被洗掉，不要過分脫色，水洗。
A.11.4.4 滴加復(fù)染液，復(fù)染1 min，水洗、待干、鏡檢。
A.12 Kovacs 靛基質(zhì)試劑
A.12.1 成分
對二甲氨基苯甲醛 5.0 g
戊醇 75.0 mL
鹽酸（濃） 25.0 mL
A.12.2 制法
將對二甲氨基苯甲醛溶于戊醇中，然后慢慢加入濃鹽酸即可。
A.12.3 試驗方法
將培養(yǎng)物接種蛋白胨水，36 ℃±1 ℃培養(yǎng)24 h±2 h后，加Kovacs靛基質(zhì)試劑0.2 mL～0.3 mL，上層出
現(xiàn)紅色為靛基質(zhì)陽性反應(yīng)。
A.13 無菌 1mol/L NaOH：
A.13.1 成分
NaOH 40.0 g
蒸餾水 1 000.0 mL
A.13.2 制法：
稱取40 g氫氧化鈉溶于1000 mL蒸餾水中，121 ℃高壓滅菌15 min。
A.14 無菌 1 mol/L HCl：
A.14.1 成分
HCl 90.0 mL
蒸餾水 1 000.0 mL
A.14.2 制法
移取濃鹽酸90 mL，用蒸餾水稀釋至1000 mL，121 ℃高壓滅菌15 min。
GB 4789.38-2012
12
附錄B
大腸埃希氏菌最可能數(shù)（MPN）檢索表
每g（mL）檢樣中大腸埃希氏菌最可能數(shù)（MPN）的檢索見表B.1。
表 B.1 大腸埃希氏菌最可能數(shù)（MPN）檢索表
陽性管數(shù)
MPN
95%置信區(qū)間  陽性管數(shù)
MPN
95%置信區(qū)間
0.10  0.01  0.001  下限  上限  0.10  0.01  0.001  下限  上限
0
0
0
0
0
0
1
1
1
1
1
1
1
1
2
2
2
2
2
2
0
0
1
1
2
3
0
0
0
1
1
2
2
3
0
0
0
1
1
1
0
1
0
1
0
0
0
1
2
0
1
0
1
0
0
1
2
0
1
2
＜3.0
3.0
3.0
6.1
6.2
9.4
3.6
7.2
11
7.4
11
11
15
16
9.2
14
20
15
20
27
-
0.15
0.15
1.2
1.2
3.6
0.17
1.3
3.6
1.3
3.6
3.
4.5
4.5
1.4
3.6
4.5
3.7
4.5
8.7
9.5
9.6
11
18
18
38
18
18
38
20
38
42
42
42
38
42
42
42
42
94
2
2
2
2
2
3
3
3
3
3
3
3
3
3
3
3
3
3
3
3
2
2
2
3
3
0
0
0
1
1
1
1
2
2
2
2
3
3
3
3
0
1
2
0
1
0
1
2
0
1
2
3
0
1
2
3
0
1
2
3
21
28
35
29
36
23
38
64
43
75
120
160
93
150
210
290
240
460
1100
＞1100
4.5
8.7
8.7
8.7
8.7
4.6
8.7
17
9
17
37
40
18
37
40
90
42
90
180
420
42
94
94
94
94
94
110
180
180
200
420
420
420
420
430
1000
1000
2000
4100
—
注1：本表采用3個稀釋度[0.1g (mL)、0.01g (mL)和0.001g (mL)]，每個稀釋接種3管。
注2：表內(nèi)所列檢樣量如改用1g (mL)、0.1g (mL)和0.01g(mL)時，表內(nèi)數(shù)字應(yīng)相應(yīng)降低10倍；如改用0.01g(mL)、0.001g
(mL)、0.0001g (mL)時，則表內(nèi)數(shù)字應(yīng)相應(yīng)增高10倍，其余類推。